Бюлетень "Ветеринарна біотехнологія"

  • Друк

Ветеринарна біотехнологія. – 2018. – Вип. 32(1). – С. 56–60. https://doi.org/10.31073/vet_biotech32(1)-05

БУЗУН А.І., канд. вет. наук, доцент, e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., СТЕГНІЙ Б.Т., д-р вет. наук, e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., КОЛЬЧИК О.В., канд. вет. наук, ст. наук. сп., e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., КОРОВІН І.В., пошукач

Національний науковий центр "Інститут експериментальної і клінічної ветеринарної медицини", м. Харків

РОЗРОБКА ІНАКТИВОВАНОЇ КОМБІНОВАНОЇ ВАКЦИНИ ПРОТИ ЦИРКОВІРУСНОЇ ІНФЕКЦІЇ, РЕПРОДУКТИВНО-РЕСПІРАТОРНОГО СИНДРОМУ ТА ГЕМОЛІТИЧНОГО ПАСТЕРЕЛЬОЗУ СВИНЕЙ

   У статті представлені результати вивчення імуногенності розробленої вакцини на мишах (n=20), яких заражали підшкірно шт. «№7» M. haemolytica в дозі 105 БТ50. Антигенність вакцини контролювали на свинях (n=5) за рівнем їх сероконверсії на 2-разове (інтервал 3 тиж.) введення препарату. Усі щеплені миші (n=10), на відміну від нещеплених (n=10) вижили після інокуляції пастерелою. Після 1-го щеплення цільовим препаратом рівень сероконверсії мишей на збудників РРСС, ЦВС-2 та пастерельозу становив, відповідно, 0; 1/2.30+0.11, а також 1/351.00+5.73 (P<0.01), а свиней – 1/8.80+2.05; 1/22.50+7.73 та 1/51.00+6.88 (P<0.05), відповідно. Через місяць після ревакцинації свині мали сероконверсію на рівні, відповідно, 1/17.40+0.78; 1/34.23+0.73 та 1/121.11+2.44 (P<0.05). Удосконалена вакцина «РепроСуіВак-ІЕКВМ» відповідає вимогам до захисних препаратів проти РРСС, ЦВС-2 та пастерельозу і може бути випробувана в наглядових та захисних зонах карантину проти АЧС для запобігання прихованого поширення в них збудника цієї хвороби.

Ключові слова: вакцина, гемолітичний пастерельоз, репродуктивно-респіраторний синдром, цирковірусна інфекція, щеплення.

СПИСОК ЛІТЕРАТУРИ

  1. Reduced antigen presentation capability and modified inflammatory/immunosuppressive cytokine expression of induced monocyte-derived dendritic cells from peripheral blood of piglets infected with porcine circovirus type 2 / N. Yang, J. Li, Q. Yang, J. Qiao, D. Cui, F. Liu, H. Li, S. Zhou // Archives of virology. – 2018. – Feb 3.
  2. Kvansakul M. The Bcl-2 Family in Host-Virus Interactions / M. Kvansakul, S. Caria, M. G. Hinds // Viruses. – 2017. – Vol. 9.
  3. Effect of experimental infection of cattle with bovine herpesvirus-1 (BHV-1) on the ex vivo interaction of bovine leukocytes with Mannheimia (Pasteurella) haemolytica leukotoxin / F. Leite, M. J. Sylte, S. O'Brien, R. Schultz, S. Peek, K. van Reeth, C.J. Czuprynski // Veterinary immunology and immunopathology. – 2002. – Vol. 84. – P. 97–110.
  4. Buzun A. Threat of hidden spread of the African swine fever as a concurrent infection in Ukraine / A. Buzun // CBEP Ukraine Research Forum and Peer. Review Session (Kyiv, Ukraine, 4–8 April 2016): abstr. – Kyiv, 2016. – 72 р.
  5. Some biological and physico-chemical properties of porcine circovirus / G.M. Allan, K.V. Phenix, D. Todd, M.S. McNulty // Zentralblatt für Veterinärmedizin. Reihe B. Journal of veterinary medicine. Series B. – 1994. – Vol. 41. – P. 17–26.
  6. Hemagglutination with porcine reproductive and respiratory syndrome virus. / E.R. Jusa, Y. Inaba, M. Kohno, H. Mashimo, O. Hirose // The Journal of veterinary medical science. – 1996. – Vol. 58. – P. 521–527.
  7. Purification and characterization of an adhesin from Pasteurella haemolytica / L. Jaramillo, F. Díaz, P. Hernández, H. Debray, F. Trigo, G. Mendoza, E. Zenteno // Glycobiology. – 2000. – Vol. 10. – P. 31–37.
  8. Immunogenicity of Mannheimia haemolytica recombinant outer membrane proteins serotype 1-specific antigen, OmpA, OmpP2, and OmpD15 / S. Ayalew, B. Shrestha, M. Montelongo, A.E. Wilson, A.W. Confer // Clinical and vaccine immunology. – 2011. – Vol. 18. – P. 2067–2074.

Повний текст статті у форматі PDF