Бюлетень "Ветеринарна біотехнологія"

  • Друк

Ветеринарна біотехнологія. – 2023. – Вип. 42. – С. 81-90. https://doi.org/10.31073/vet_biotech42-09

СЕРЕДА О.В., канд. хім. наук, ст. наук. сп., e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., СПИРИДОНОВ В.Г., д-р. с.-г. наук, ст. наук. сп., e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., ТАРАСОВ О.А., канд. вет. наук, ст. наук. сп., e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., КРИЦЯ Я.П., канд. вет. наук, доцент, e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., НИЧИК С.А., д-р. вет. наук, чл.-кор. НААН, e-mail: Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Інститут ветеринарної медицини НААН

 

РОЗРОБКА ЕКСПРЕС-ТЕСТУ НА ВИЯВЛЕННЯ АНТИГЕНУВІРУСУ АФРИКАНСЬКОЇ ЧУМИ СВИНЕЙ МЕТОДОМ МАГНІТНОГО ІМУНОФЛУОРЕСЦЕНТНОГО АНАЛІЗУ

   Для розробки методу магнітного імунофлуоресцентного аналізу (МІФлА) отримано магнітні агарозні мікросфери розміром 40-150мкм з рівномірно диспергованими в них частинками магнетиту. До магнітних частинок були сорбовані специфічні курячі антитіла проти антигену К204R вірусу африканської чуми свиней (АЧС) та випробувані у тесті з антигеном АЧС у варіанті сендвіч-аналізу з подвійними антитілами. Отримані імунокомплекси антиген - антитіло, мічені флуоресцентною міткою, були візуалізовані за допомогою флуоресцентного мікроскопа і можуть бути кількісно оцінені за інтенсивністю свічення флуориметром.

Ключові слова: імунофлуоресцентний аналіз, магнітні агарозні мікросфери, африканська чума свиней.

 REFERENCES

  1.  Radchuk, N.A., Dunayev, H.V., Kolyyev, N.M., et al. (1991). Veterynarnamikrobiolohiya ta imunolohiya [Veterinary microbiology and immunology]. Moskow: Ahropromvydav [in Russian].
  2. Cullinane, A.A., Garvey, M. (2021). A review of diagnostic tests recommended by the World Organisation for Animal Health Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Scientific & Technical Review, 01, 1, 75-89. doi: https://doi.org/10.20506/rst.40.1.3209.
  3. You, M., Li, Z., Zhang, P., Bai, D., Lin, M., & Xu, F. (2018). Nanomaterial- and Micromaterial-Based Immunoassays. Handbook of Immunoassay Technologies, 273-304. doi:10.1016/b978-0-12-811762-0.00011-6.
  4. Makhneva, E., Sklenárová D., Brandmeier, J.C., Hlaváček, A, Gorris, H.H., Skládal, P., Farka, Z. (2022). Influence of Label and Solid Support on the Performance of Heterogeneous Immunoassays. Anal Chem., 94(47), 16376-16383. doi: 10.1021/acs.analchem.2c03543. PMID: 36383476.
  5. Christopher-Hennings, J., Araujo, K.P.C., Souza, C.J.H., Fang, Y., Lawson, S., Nelson, E.A., Lunney, J.K. (2013). Opportunities for bead-based multiplex assays in veterinary diagnostic laboratories. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 25(6),671-691. doi:10.1177/1040638713507256.
  6. Zucca, P., Fernandez-Lafuente, R., &Sanjust, E. (2016). Agarose and Its Derivatives as Supports for Enzyme Immobilization. Molecules, 21(11),1577. doi:10.3390/molecules21111577.
  7. Ioannidis, N., Bowen, J., Pacek, A., & Zhang, Z. (2012). Manufacturing of agarose-based chromatographic adsorbents – Effect of ionic strength and cooling conditions on particle structure and mechanical strength. Journal of Colloid and Interface Science, 367(1),153-160. doi:10.1016/j.jcis.2011.10.063.
  8. Kaboord, B., & Perr, M. (2008). Isolation of Proteins and Protein Complexes by Immunoprecipitation. Methods in Molecular Biology, 424, 2D PAGE: Sample Preparation and Fractionation, 349-364. doi:10.1007/978-1-60327-064-9_27.
  9. Spyrydonov, V., Pihida, D., Sereda, A., Likhanov, A., & Yu, W. (2020). Production and evaluation of egg derived hot start antibodies. Electronic Journal of Biotechnology, 44,6-13. doi:10.1016/j.ejbt.2020.01.005.
  10. Hermanson, G.T. (2013). Fluorescent Probes. Bioconjugate Techniques, 395-463. doi:10.1016/b978-0-12-382239-0.00010-8.
  11. Mu, Y., Lyddiatt, A., &Pacek, A.W. (2005). Manufacture by water/oil emulsification of porous agarose beads: Effect of processing conditions on mean particle size, size distribution and mechanical properties. Chemical Engineering and Processing: Process Intensification, 44(10),1157-1166.
  12. Gustavsson, P.-E., & Larsson, P.-O. (1996). Superporous agarose, a new material for chromatography. Journal of ChromatographyA, 734(2), 231-240. doi:10.1016/0021-9673(95)01304-0.
  13. Safdarian, M., Hashemi, P., &Adeli, M. (2013). One-step synthesis of agarose coated magnetic nanoparticles and their application in the solid phase extraction of Pd(II) using a new magnetic field agitation device. Analytica Chimica Acta, 774,44-50. doi:10.1016/j.aca.2013.03.006.
  14. Li, J., Guo, Z., Zhang, S., & Wang, X. (2011). Enrich and seal radionuclides in magnetic agarose microspheres. Chemical Engineering Journal, 172(2-3),892-897.
  15. Müller, T.K.H., Cao, P., Ewert, S., Wohlgemuth, J., Liu, H., Willett, T.C., Franzreb, M. (2013). Integrated system for temperature-controlled fast protein liquid chromatography comprising improved copolymer modified beaded agarose adsorbents and a travelling cooling zone reactor arrangement. Journal of Chromatography A, 1285,97-109. doi:10.1016/j.chroma.2013.02.025.

Повний текст статті у форматі PDF